一、細胞培養(yǎng)

人結腸癌細胞系CaCo2、HT29、HCT116、SW480、SW620、SW1116、LoVo均購自ATCC，并由上海消化外科研究所傳代保存。LoVo采用含10％胎牛血清的F-12K培養(yǎng)傳代；CaCo2、HT29、HCT116、SW480、SW620、SW1116均使用含10％胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)液，置于37℃、5％CO2的培養(yǎng)箱中，以1∶2至1∶4的比例傳代培養(yǎng)。

二、方法

1.樣本收集及免疫組化染色：結腸直腸腫瘤標本取自上海市微創(chuàng)外科臨床醫(yī)學中心手術室。手術標本切除后生理鹽水清洗，打開腸腔，剔除瘤體表面壞死及炎性肉芽組織；取腫瘤中心部位及距腫瘤5cm以上的正常腸黏膜全層組織，切成1cm塊狀后置入樣本管。組織標本經4%甲醛溶液充分固定后，制作蠟塊，切片、貼片。隨后采用鏈霉素親和素-過氧化酶復合物（SP）法進行免疫組化染色，DAB顯色。TMPRSS4多克隆抗體購自美國Proteintech公司，1∶50稀釋。

2.半定量RT-PCR：采用Trizol試劑（Invitrogen，美國）提取細胞總RNA。電泳鑒定RNA完整性，分光光度計260nm處測定RNA濃度，使用逆轉錄試劑盒（Takara，日本）在ABIPrismSDS7000中進行逆轉錄cDNA合成。上海吉瑪生物有限公司合成如下引物：TMPRSS4上游引物5′-TCCAAGGACCGATCCACACT-3′，下游引物5′-AAGTTGTCGAAACAGGCAGAG-3′；GAPDH上游引物5′-GACATCAAGAAGGTGGTGAA-3′，下游引物5′-TGTCATACCAGGAAATGAGC-3′。cDNA在PCR儀(AppliedBiosystems，美國)中進行反應，50℃2min、95℃10min、95℃15s、60℃30s、72℃30s，共35個循環(huán)；然后，72℃10min，擴增產物于1％瓊脂糖凝膠中，130V、30min條件下電泳并在紫外燈下攝片，成像保存。

3.Western印跡法：細胞在10cm培養(yǎng)皿（Corning，美國）中生長融合約90%時，PBS清洗2次后加入300μLRIPA，置冰上30min裂解充分后煮沸10min，隨后13000r/min離心5min。取上清液，BCA法測定蛋白質濃度。每孔上樣量100μg，加入5×上樣緩沖液、去離子水至總體積一致后變性電泳（積層膠80V，分離膠120V），半干轉法轉膜（15V）70min后脫脂牛奶室溫封閉2h，4℃下一抗（兔抗人TMPRSS4多抗，112831-AP，Proteintech，美國，1∶600稀釋）孵育過夜。TBST洗膜3遍后加入一定比例稀釋的相應二抗室溫孵育1h，TBST洗膜2次，PBS洗膜1次后熒光發(fā)光顯色。

4.siRNA瞬時轉染：細胞生長至70%融合時胰酶消化，計數后按每孔3×105細胞鋪6孔板，過夜。24h后按照Lipofectamine2000（Invitrogen，美國）說明書操作進行細胞轉染。由上海吉瑪生物有限公司設計并合成TMRPSS4-siRNA序列：5′-AAGUUGUCGAAACAGGCAGAGAACC-3′（si組）。僅轉染Lipo2000的細胞為空白對照組，轉染陰性對照序列的細胞為陰性對照組（NC組）。轉染48h后用Trizol試劑提取細胞總RNA，72h提取總蛋白質。

5.CCK-8測細胞增殖：取轉染后SW480細胞計數后鋪于96孔板，每孔100個；設干擾組、陰性對照組和空白對照組，每組6個復孔。在第0、24、48、72、96和120h，分別于各孔加入CCK-8試劑（cellcountingkit-8，Dojindo,日本）10μL，37℃孵育2.5h，酶標儀測定各孔在450nm的吸光度值。以時間為橫坐標、吸光度值為縱坐標繪制細胞生長曲線。

6.AnnexinⅤ/PI流式檢測細胞凋亡：轉染48h后收細胞，取100μL細胞懸液（1×106個/mL）至流式管，用PBS洗滌1次，離心后加入300μL結合緩沖液，混勻，再加入5μL的AnnexinⅤ-FITC和5μL的PI，孵育15min后用流式細胞儀（BD，美國）上機檢測。

7.劃痕試驗：6孔板轉染，待細胞鋪滿后，用無菌槍頭每孔筆直劃線，PBS清洗3次，加入無血清培養(yǎng)液置培養(yǎng)箱孵育。24h后在顯微鏡下每孔隨機選取視野觀察攝片。

8.transwell遷移試驗：取轉染24h后細胞，無血清RPMI1640培養(yǎng)液重懸后計數，調至終密度為5×105個/mL。24孔板每孔內加入900μL含10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)液，隨后置入transwell小室（Corning，美國），小室內加入200μL細胞懸液（105個細胞）。培養(yǎng)箱孵育24h后取出，棉簽拭去內室面細胞，甲醇固定小室外穿出細胞10min，1%結晶紫染色10min，PBS清洗3遍后，顯微鏡下觀察攝片。

三、統(tǒng)計學方法

采用SPSS11．0軟件進行統(tǒng)計學分析，計數資料采用χ2檢驗。P<0．05為差異有統(tǒng)計學意義。

1.免疫組化檢測TMPRSS4蛋白在結腸直腸癌組織和正常腸上皮中表達標本免疫組化染色顯示，TMPRSS4蛋白定位于細胞膜上，在腫瘤組織和轉移淋巴結中均染色陽性，且轉移淋巴結中TMPRSS4蛋白染色更強。表明TMPRSS4表達可能與腫瘤細胞遷移能力有一定相關性。

2.半定量RT-PCR和Western印跡檢測TMPRSS4在結腸癌細胞株中的表達通過半定量RT-PCR檢測發(fā)現，TMPRSS4基因在7株結腸癌細胞中有不同程度的表達，其中在HT29、SW480、SW620、SW1116中的表達相對較高。Western印跡檢測亦有類似結果，有細胞均不同程度表達TMPRSS4蛋白，而HCT116、SW480和SW1116蛋白表達量相對較高。因此，本研究決定選用SW480細胞進行下一步試驗。三、siRNA瞬時轉染后SW480細胞中TMPRSS4蛋白表達下調在轉染siRNA48h后，Western印跡法檢測發(fā)現，與空白對照組和NC組相比，siRNA干擾組（si組）的TMPRSS4蛋白表達明顯下降。

3.TMPRSS4下調可顯著抑制SW480細胞的增殖能力siRNA處理SW480細胞株后，采用CCK-8法測定細胞增殖能力。在第1、2、3、4、5天不同時間點分別測定吸光度值，吸光度值可間接反映細胞增殖能力的強弱。與空白對照組和NC組相比，si組細胞增殖能力在48~96h時受到明顯抑制（P<0.05)。

4.下調TMPRSS4誘導SW480細胞凋亡SW480細胞株轉染TMPRSS4siRNA后孵育48h，收集細胞，用AnnexinⅤ/PI雙染色法檢測細胞周期，si組細胞凋亡比值為14.0%，而空白對照組和NC組分別為10.4%和10.1%，有統(tǒng)計學差異（P<0.05）。提示下調TMPRSS4可能有誘導結腸癌細胞凋亡的作用。

5.siRNA干擾TMPRSS4表達顯著影響SW480細胞的遷移能力采用siRNA處理SW480細胞后，進行細胞劃痕及transwell遷移試驗。結果顯示，si組的SW480細胞在劃痕試驗中的運動能力比對照組顯著降低(P<0.05)；si組在transwell試驗中的穿膜細胞數亦比對照組顯著降低(P<0.05)。

四、討論

Ⅱ型跨膜絲氨酸蛋白酶是一類新近發(fā)現的特殊蛋白酶，具有明顯的組織表達特異性，且與耳聾、貧血、高血壓和腫瘤等的發(fā)生相關。本研究探討該家族成員TMRPSS4在結腸直腸癌組織中的表達及其對增殖、凋亡、遷移等方面的影響。采用siRNA干擾TMPRSS4表達后，發(fā)現腫瘤細胞的增殖能力減弱，同時細胞運動遷移能力也降低，這與Jung等先前的研究結果相一致。針對該蛋白質的其他研究表明，TMPRSS4可能通過作用于細胞間黏附分子或激活其他蛋白酶在組織發(fā)育和細胞分化中發(fā)揮重要作用；并通過發(fā)揮其蛋白酶的水解作用裂解病毒表面的紅細胞凝集素，促進病毒在肺部的擴散而致病。因此，推測該基因可能通過靶向作用于細胞外基質及細胞-細胞間連接分子而在調控SW480細胞的增殖及遷移中發(fā)揮作用，具體機制尚有待后續(xù)研究來揭示。同時，流式細胞凋亡檢測顯示，在siRNA干擾后，SW480細胞的凋亡比例明顯增加，這與干擾后細胞的增殖能力降低相一致，表明敲除TMPRSS4基因可能通過誘導細胞凋亡而抑制增殖。最近有研究表明，乳腺癌中TMPRSS4表達與淋巴結轉移、病理分期差、腫瘤體積大以及總生存率和無病生存率低相關。本研究初步顯示，TMPRSS4在結腸直腸癌組織和轉移淋巴結中有不同程度表達，且轉移淋巴結染色強度略高。因此，有必要進一步探討TMPRSS4與結腸直腸癌病理分期、分級、淋巴結轉移及病人預后間的相關性，為其作為預后預測因素提供依據。我們將繼續(xù)探討TMPRSS4對于結腸癌細胞增殖、凋亡、侵襲方面的具體作用機制，揭示這一基因對于結腸直腸癌發(fā)生、發(fā)展的作用。

作者：黃傲 周厚民 趙紅超 全應軍 金潤森 樂飛 馬君俊 馮波 鄭民華 單位：上海交通大學青島市市立醫(yī)院